تعداد نشریات | 43 |
تعداد شمارهها | 1,673 |
تعداد مقالات | 13,655 |
تعداد مشاهده مقاله | 31,588,273 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 12,480,909 |
جداسازی و شناسایی ژنهای مقاومت آنتیبیوتیکی در ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از عفونتهای دستگاه تنفسی در شهرستان شهرکرد | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
زیست شناسی میکروبی | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مقاله 11، دوره 3، شماره 10، تیر 1393، صفحه 97-106 اصل مقاله (401.91 K) | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
نویسندگان | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مریم رئیسی* 1؛ الهه تاج بخش2؛ حسن ممتاز3 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
1دانشجوی کارشناسی ارشد میکروبیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهرکرد، ایران | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
2استادیار میکروبیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهرکرد، ایران | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
3دانشیار میکروبیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهرکرد، ایران | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
چکیده | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مقدمه : استافیلوکوکوس اورئوس یکی ازعوامل اصلی بیماریزا در انسان محسوب میشود که با درگیر کردن قسمتهای مختلف بدن از جمله دستگاه تنفس باعث صرف هزینههای فراوان و طولانی شدن دوره درمان بیمار میشود. این مطالعه، با هدف جداسازی وبررسی الگوی مقاومت آنتیبیوتیکی در ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از عفونتهای فوقانی دستگاه تنفسی در شهرستان شهرکرد انجام شد . مواد و روشها: این تحقیق، به شکل مقطعی- توصیفی بر روی 200 نفر از افراد مشکوک به عفونتهای دستگاه تنفسی فوقانی مراجعه کننده به کلینیک امام علی شهرستان شهرکرد در سال 1391 انجام شد. پس از جداسازی استافیلوکوکوس اورئوس از ترشحات بینی کشت داده شده، به منظور شناسایی ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی در ایزولهها، آزمون واکنش زنجیره ای پلیمراز ( PCR ) با استفاده از زوج پرایمرهای اختصاصی انجام شد. نتایج: از 200 نمونه مورد بررسی، در 60 مورد (30 درصد) آلودگی با استافیلوکوکوس اورئوس (در روش کشت و PCR ) تعیین شد که در بررسی الگوی مقاومت ضدمیکروبی، بیشترین مقاومت میکروبی به پنی سیلین و سفوتاکسیم (100 درصد) و کمترین میزان مقاومت آنتیبیوتیکی ایزولهها به وانکومایسین (5/0 درصد) برآورد شد. ژن mecA (کد کننده مقاومت به متی سیلین) با فراوانی 18/85 درصد و ژن aacA-D (کد کننده مقاومت به آمینوگلیکوزیدها) با فراوانی 33/28 درصد بیشترین و کمترین ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی ردیابی شده در ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس بودند. بحث و نتیجهگیری: شیوع ایزولههایاستافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به آنتیبیوتیک در افراد مبتلا به بیماریهای دستگاه تنفسی لزوم کنترل دائمی ناقلین و درمان آنها را برای جلوگیری از اشاعه این باکتری وعفونتهای حاصل از آن را توصیه میکند. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
کلیدواژهها | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
استافیلوکوکوس اورئوس؛ ژنهای مقاومت آنتیبیوتیکی؛ عفونت دستگاه تنفسی | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
اصل مقاله | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مقدمه استافیلوکوکوس اورئوس[1] یک کوکسی گرم مثبت دارای کروموزوم حلقوی است که ژنهای بیماریزایی و مقاومت آنتیبیوتیکی روی آن قرار دارد (1 و 2). استافیلوکوکوس اورئوس مهمترین پاتوژن خانواده میکروکوکاسیه محسوب میشود که عامل بیش از 80 درصد از موارد بیماریهای چرکی و دومین عامل عفونتهای بیمارستانی[2] (3) بوده و همچنین، به عنوان عامل بیماریهای سندرم فلسی شدن پوست (SSS) [3]، مسمومیت غذایی[4]، سندرم شوک سمی (TSS) [5]، باکتریمی[6]، اندوکاردیت[7] و پنومونی[8] شناخته شده است (4). سویههای مختلف استافیلوکوکوس اورئوس و نیز برخی از استافیلوکوکوسهای کواگولاز منفی (CNS) [9] از عوامل عفونتهای بیمارستانی و عفونتهای اکتسابی از جامعه در سراسر جهان هستند (5). تجویز نامناسب آنتیبیوتیکها و مصرف بی رویه آنها در انتخاب سوشهای مقاوم استافیلوکوکوس اورئوس نقش دارند (6 و 7). در سال 1942 بعضی از سوشهای استافیلوکوک به پنی سیلین مقاوم شدند (6). در طی یک دهه بعد سوشهای مقاوم چندگانه به تتراسایکلین، کلرامفنیکل و اریترومایسین گزارش شدند (8 و 9). برای نخستین بار در سال 1960 استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متی سیلین (MRSA)[10] به عنوان یک پاتوژن بیمارستانی معرفی شد (10). استافیلوکوکوس اورئوس یکی از عوامل ایجاد کننده عفونتهای دستگاه تنفسی مانند پنومونی است که این بیماری توسط آنتیبیوتیکهای سیستمیک (وانکومایسین، کلیندامایسین یا سفالوسپورینهای نسل اول) درمان میشود (4 و 11). از طرف دیگر، این باکتری قادر به مقاومت در برابر بیگانه خواری و ایمنیسلولی است (12) و آنزیمی را تولید میکند که اکثر درمانهای بر پایه پنیسیلین را بی اثر میکند (4). سوشهایاستافیلوکوکوس اورئوسعلاوه بر آنتیبیوتیک متی سیلین، ممکن است نسبت به آنتیبیوتیکهای دیگری مانند بتالاکتامها، ماکرولیدها، لینکوزامیدها، فلوروکوئینولونها، استرپتوگرامینها و آمینوگلیکوزیدها مقاوم باشند. به همین علت گاهی به درمان آنتیبیوتیکی پاسخ نمیدهند (13 و 14). مقاومت علیه آنتیبیوتیکها به وسیله مکانیسمهای غیرژنتیکی (غیرفعالسازی آنزیماتیک دارو، تغییر سایت هدف ریبوزوم، کاهش نفوذ پذیری و پس زدگی دارو[11]) و مکانیسمهای ژنتیکی (کانژوگاسیون[12]، ترانسفورماسیون[13] و ترانس داکسیون[14]) ایجاد میشود (11). ژنهای مقاومت به آنتیبیوتیک mecA (متیسیلین)، aacA-D (آمینوگلیکوزیدها)، tetM و tetK (تتراسایکلینها)، msrA و msrB (ماکرولیدها) در دهه اخیر در ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس مشاهده شده که این ژنها عملکردهای متفاوتی را انجام میدهند (15 و 16). ژن mecA، PBP2a[15] را کد میکند (6)، ژن aacA-Dآنزیمهای دو عملکردی را کد میکند (17)، ژن msr (A,B) در استافیلوکوکها موجب مقاومت نسبت به ماکرولیدها و استرپتوگرامینهای تیپ B میشود که به فنوتیپ [16]MSLB معروف است و بر روی فعالیت پمپ افلوکس تأثیر میگذارد (17- 19) و tet (K,M) که موجب تغییر سایت هدف و یا افلوکس میشود (17). بنابراین، تشخیص ژنهای مقاومت به آنتیبیوتیکها در سویههای استافیلوکوکوس اورئوس با ویرولانس بالا به منظور استفاده صحیح از آنتیبیوتیکها برای درمان مؤثر ضروری است (15- 17). هدف از این تحقیق، ردیابی ژنهای کد کننده مقاومت به آنتیبیوتیکهای مختلف از جمله ژنهای مقاومت به متی سیلین (mecA)، ماکرولیدها (msrA, msrB)، آمینوگلیکوزیدها (aacA-D) و تتراسایکلینها (tetM, tetK) با تکنیک مولتی پلکس PCR در ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از موارد عفونتهای دستگاه تنفسی در شهرستان شهرکرد است.
مواد و روشها نمونهگیری و جداسازی استافیلوکوکوس اورئوس تعداد 200 نمونه سواب بینی از افراد مشکوک به عفونتهای قسمت فوقانی دستگاه تنفس (رینیت[17]، لارنژیت[18]، تراکئیت[19] و غیره ... ) اخذ شد. نمونهها با استفاده از سواب استریل از قسمت قدامی بینی افراد بیمار مراجعه کننده به کلینیک امام علی شهرستان شهرکرد در طول 6 ماهه دوم سال 1391 اخذ و به مدت 24 ساعت در 37 درجه سانتیگراد در محیط پپتون واتر (مرک، آلمان)[20] کشت داده شدند. پس از غنیسازی اولیه، نمونههای رشد کرده در محیطهای جامد بلاد آگار (مرک، آلمان)[21] و مانیتول سالت آگار (های مدیا، هند) [22] کشت داده شد. روی پرگنههای مشکوک به استافیلوکوکوس اورئوس آزمایشهایی مانند: رنگآمیزی گرم[23]، کاتالاز[24]، کواگولاز[25] و دزاکسی ریبونوکلئاز[26]انجام و باکتریهای جداشده پس از شناسایی به عنوان ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس، برای مطالعات بعدی در محیط مایع مغز و قلب (BHI) (مرک، آلمان) [27] کشت و نگهداری شدند (20-22). آزمایشهای مولکولی به منظور تائید قطعی وجود استافیلوکوکوس اورئوس در نمونههای کشت داده شده و ردیابی ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی در ایزولهها، از واکنش زنجیره ای پلیمراز (PCR) [28] استفاده شد. در این راستا، ابتدا DNA ژنومی باکتریهای رشد یافته در محیطBHI با استفاده از کیت استخراج DNA (فرمنتاز، آلمان) [29]، استخراج و در دو مرحله آزمایش PCR روی DNA تخلیص شده انجام شد: در مرحله اول، حضور قطعی استافیلوکوکوس اورئوس در ایزولهها با ردیابی ژن کد کننده در مرحله دوم، ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی شامل: ژنهای mecA (مقاومت به متیسیلین)، aacA-D (مقاومت به آمینوگلیکوزیدها)، tetM و tetK (مقاومت به تتراسایکلین) و msrA و msrB (مقاومت به ماکرولیدها) به روش PCR چندگانه ای با استفاده از زوج پرایمرهای نشان داده شده در جدول 1 به شرح زیر انجام شد: واکنش PCR در حجم 50 میکرولیتر شامل: 5 میکرولیتر بافر PCR (10x)، 5/1 میلیمول MgCl2، 250 میکرومول dNTP Mix، 5/0 میکرومول از زوج پرایمرهای F و R مربوط به هر ژن، 5/1 واحد آنزیم DNA Taq پلیمراز و 5 میکرولیتر DNA هر نمونه بود. برنامه حرارتی مورد استفاده در این مرحله شامل: پس از انجام آزمایشهای PCR، محصول PCR روی ژل 1درصد آگاروز واجد اتیدیوم بروماید[33] در ولتاژ ثابت 90 ولت در حضور نشانگر 100 جفت بازی DNA (فرمنتاز، آلمان) الکتروفورز و نتیجه با دستگاه تصویر بردار از ژل (انگلستان، یووی تک[34]) بررسی شد (20). آزمایش آنتیبیوگرام به منظور تعیین الگوی مقاومت آنتیبیوتیکی ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس از روش کربی بائر[35] (انتشاراز دیسک) طبق دستورالعمل NCCLS[36] (2006) استفاده شد. برای این منظور باکتریهای جدا شده به مدت 24 ساعت در محیط جامد مولر هینتون آگار (های مدیا، هند) [37] در حضور دیسکهای آنتیبیوتیکی پنی سیلین (10 واحد)، سیپروفلوکساسین (5 میکروگرم)، اگزاسیلین (1 میکروگرم)، جنتامیسین (10 میکروگرم)، تتراسایکلین (30 میکروگرم)، اریترومایسین (15 میکروگرم)، کوتریموکسازول (25 میکروگرم)، ریفامپین (30 میکروگرم)، سفتازیدیم (30 میکروگرم)، سفالوتین (30 میکروگرم)، کلوگزاسیلین (5 میکروگرم)، وانکومایسین (30 میکروگرم)، آموکسی کلاو (30 میکروگرم)، سفالکسین (30 میکروگرم)، سفوتاکسیم (30 میکروگرم) و متی سیلین (5 میکروگرم) (شرکت پادتن طب) در دمای 37 درجه کشت و با اندازهگیری قطر هاله عدم رشد، مقاومت میکروبی نسبت به آنتیبیوتیکهای مورد نظر تعیین و ثبت شد (22 و 23). تجزیه و تحلیل آماری دادههای حاصل از مطالعه با استفاده از نرم افزار آماری اس.پی.اس.اس[38] و مدلهای آماری کای اسکوار و دقیق فیشر ارزیابی شده و وجود ارتباط بین حضور انواع ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی و الگوی مقاومت ضدمیکروبی در ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از عفونتهای قسمت فوقانی دستگاه تنفس تعیین شد. در این راستا، وجود (P value <0.05) به عنوان وجود رابطه آماری معنیدار بین دو عامل مورد مطالعه در نظر گرفته شد.
جدول 1- توالی پرایمرهای مورد استفاده برای ردیابی ژنهای مقاومت آنتیبیوتیکی در ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از دستگاه تنفسی (20)
نتایج از مجموع 200 بیمار مورد مطالعه در 60 مورد (30 درصد) استافیلوکوکوس اورئوس از ترشحات بینی جدا و با انجام آزمایش PCR وجود قطعی آلودگی اثبات شد. در آزمایش آنتیبیوگرام برای تعیین الگوی مقاومت آنتیبیوتیکی ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس از آنتیبیوتیکهای معمول در درمان عفونتهای بالینی تنفسی در انسان استفاده شد که همانگونه که در جدول 2 نشان داده شده است، تمام ایزولهها نسبت به دو آنتیبیوتیک پنی سیلین و سفوتاکسیم مقاوم بودند. در این آزمایش 33/58 درصد از ایزولهها نسبت به تتراسایکلین و تنها 5/0 درصد از آنها نسبت به آنتیبیوتیک وانکومایسین مقاوم بودند. در تجزیه و تحلیل آماری اطلاعات حاصل از جدول 2 اختلاف آماری معنیدار بین میزان مقاومت آنتیبیوتیکی ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس نسبت به پنی سیلین و سفوتاکسیم با دیگر آنتیبیوتیکها برای ردیابی برخی از ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی از جمله ژنهای کد کننده مقاومت به آمینوگلیکوزیدها، ماکرولیدها، تتراسایکلین و متیسیلین از آزمایش PCR چندگانه استفاده شد. همان گونه که در جدول 2، مشهود است، شایعترین ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی در ایزولههای مورد مطالعه ژن mecA با 18/85 درصد فراوانی و نادرترین آنها ژن کد کننده مقاومت به آمینوگلیکوزیدها (aacA-D) 33/28 درصد بود. در تحلیل آماری این اطلاعات، اختلاف آماری معنیدار بین فراوانی حضور دو ژن mecA و tetK با ژن aacA-Dدر سطح اطمینان 95 درصد مشاهده شد (P value=0.0364). نتایج الکتروفورز ژل آگاروز حاصل از PCR چندگانه ژنهای کدکننده مقاومت آنتیبیوتیکی درایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جداشده از دستگاه تنفسی در شکلهای 1 و 2 مشاهده میشوند.
شکل1- تصویر الکتروفورز ژل آگاروز PCR چندگانه مربوط به ژنهای کد کننده مقاومت آنتی بیوتیکی در استافیلوکوکوس اورئوسهای جداشده از دستگاه تنفسی. mecA (532 جفت باز)، tetK (360 جفت باز) و tetM (158 جفت باز) ؛ ستون M: DNA نشانگر با وزن مولکولی 100 جفت باز، ستون 1: کنترل منفی، ستونهای2-7: نمونههای مثبت.
شکل2- تصویر الکتروفورز ژل آگاروز PCR چندگانه مربوط به ژنهای کد کننده مقاومت آنتی بیوتیکی در استافیلوکوکوس اورئوسهایجداشده از دستگاه تنفسی. msrA (940 جفت باز)، msrB (595جفت باز) و aacA-D (227 جفت باز)، ستون M: DNA نشانگر با وزن مولکولی 100 جفت باز، ستون 1: کنترل منفی، ستونهای2-7: نمونههای مثبت.
جدول2- الگوی مقاومت آنتیبیوتیکی و توزیع فراوانی ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی در ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از دستگاه تنفسی
بحث و نتیجهگیری مطالعه حاضر، با هدف تعیین الگوی مقاومت آنتیبیوتیکی ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از ترشحات بینی افراد مشکوک به عفونتهای دستگاه تنفس فوقانی مراجعه کننده به کلینیک امام علی شهرستان شهرکرد با دو روش معمول آنتیبیوگرام و مولکولی PCR انجام شد. از مجموع 200 نمونه مورد مطالعه در 60 نمونه (30 درصد) آلودگی با استافیلوکوکوس اورئوس یافت شد که در آزمایش آنتیبیوگرام تمام این ایزولهها نسبت به پنی سیلین مقاوم بودند. صادری[39]و همکاران در سال 82-1381 در 87 ایزوله استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متی سیلین (MRSA) جدا شده از بینی، مقاومت به پنی سیلین را 8/90 درصد گزارش کردند (24). تی وادروس[40] و گدبو[41] در سال 1984 میزان مقاومت به پنی سیلین را در 109 سویه استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از ترشحات بینی در افراد مراجعه کننده به بیمارستان 2/86 درصد برآورد کردند (25). توکلی[42]و همکاران در سال 1380تمام سویههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده در مطالعه خود را مقاوم به پنی سیلین گزارش دادند (26). حساسیت ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده به سفالکسین در مطالعه حاضر67/96 درصد تعیین شد. این در حالی است که در مطالعه صفدری[43] و همکاران در سال 1391در بیمارستان قائم مشهد این میزان 57 درصد (27)، در مطالعه توکلی و همکاران 6/81 درصد و در مطالعه قاسمیان[44]و همکاران در سال 1383، 4/69 درصد گزارش شد (26 و 28) ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوسدر مطالعه حاضر 95 درصد حساسیت به اریترومایسین و 5/99 درصد حساسیت به وانکومایسین نشان دادند. رشیدیان[45] و همکاران در مطالعه خود در سال 1380 که در بیمارستان بعثت سنندج انجام شد حساسیت سویههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده را به اریترومایسین 59 درصد و قاسمیان و همکاران در سال 1383 حساسیت ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس به وانکومایسین را 4/44 درصد برآورد کردند (28 و 29). در مورد دیگر آنتیبیوتیکهای مورد مطالعه نیز نتایج مشابه یا متفاوتی با دیگر محققان از ایران یافت شد که این اختلافات میتواند ناشی از اختصاصات بومی هر منطقه، روش به کار رفته برای تعیین میزان حساسیت و عوامل دخیل در ایجاد مقاومت دارویی از جمله پلاسمیدهای قابل انتقال و غیره... باشد. در مجموع تمام ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس مورد بررسی در مطالعه حاضر دارای مقاومت چندگانه به آنتیبیوتیک مختلف هستند که این خود خطر استفاده بی رویه از آنتیبیوتیکها را در سطح جامعه دو چندان میکند. در قسمت دیگر از این تحقیق، ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی در استافیلوکوکوس اورئوس بررسی شدند و از روش PCR چندگانه برای ردیابی ژنهای مورد مطالعه استفاده شد که نتایج نشان داد ژن mecA (کد کننده مقاومت به متی سیلین) در 18/85 درصد از ایزولههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از ترشحات بینی وجود دارد. استرومنگر[46] و همکاران در سال 2003 در آلمان از روش PCR چندگانه برای ردیابی ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی در استافیلوکوکوس اورئوس استفاده کردند و نشان دادند که ژنهای tetM، tetK، aacA-D و mecA به ترتیب در 66/26، 66/16، 33/66 و 33/93 درصد از ایزولهها وجود دارد اما هیچ کدام از آنها حامل ژنهای vatA و vatB نیستند (30). حیدری[47] و همکاران در سال 2001 فراوانی حضور ژنهای mecA، msrA، msrB، aacA-D، tetK و tetM را در سویههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از عفونتهای بالینی انسان و ورم پستان در گاو را به ترتیب 18/85، 29/46، 07/49، 33/33، 50/80 و 66/66 درصد تعیین کردند (20). در مجموع، نتایج حاصل از مطالعه حاضر و مقایسه آن با سایر تحقیقات انجام شده در ایران و جهان نشان میدهد که اکثر سویههای استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از موارد مختلف عفونتهای بالینی در انسان و دام نسبت به آنتیبیوتیکهای معمول در درمان عفونتها مقاوم هستند که این مقاومت میتواند ریشه کروموزومی یا پلاسمیدی داشته باشد. بنابراین، استفاده از روش مولکولی نظیر PCR برای ردیابی سریع ژنهای کد کننده مقاومت آنتیبیوتیکی در باکتریها از جمله استافیلوکوکوس ضروری به نظر رسیده و نتایج حاصل از این کار میتواند در انتخاب دقیق آنتیبیوتیک مناسب در درمان و جلوگیری از گسترش بیشتر مقاومتهای آنتیبیوتیکی در باکتریها کمک شایانی نماید. تشکر و قدردانی از کمکهای جناب آقای دکتر ممتاز دانشیار محترم دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهرکردکه در انجام این پژوهش، ما را یاری کردند و همچنین، از جناب آقای مؤمنی کارشناس مرکز تحقیقات بیوتکنولوژی دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهرکرد برای همکاری صمیمانه ایشان در مراحل انجام آزمایش تشکر و قدردانی میشود.
[1]- Staphylococcus aureus [2]- Nosocomial infections [3]- Scalded Skin Syndrome [4]- Food poisoning [5]- Toxic Shock Syndrome [6]- Bacteriema [7] -Endocarditis [8]- Pneumonia [9]- Coagulase negative Staphylococci [10]- Methicillin Resistant Staphylococcus aureus [11]- Efflux [12]- Conjugation [13]- Transformation [14]- Transduction [15]- PenicillinBindingProtein 2a [16]- Macrolide- Lincosamide- StreptograminB [17]- Rhinitis [18]- Laryngitis [19]- Tracheitis [20]- Peptone water (Merck, Germany) [21]- Blood agar (Merck, Germany) [22]- Mannitol Salt Agar (HiMedia, india) [23]- Gram stain [24]- Catalase [25]- Coagulase [26]- DNase Test [27]- Brain Heart Infusion (merck, Germany) [28]- Polymerase Chain Reaction [29]- DNA extraction kit (fermentas, Germany) [30]- PCR buffer [31]- DNA Taq polymerase (cinna gene) [32]- Thermocycler Master Cycler Gradient (eppendorf, Germany) [33]- Ethidium Bromide [34]- Uviteck [35]- Kirby-Bauer [36]- National Committee for Clinical Laboratory Standards [37]- Muller Hinton Agar (HiMedia, India) [38]- SPSS (ver 16) [39]- Saderi [40]- Tewodros [41]- Gedebou [42]-Tavakoli [43]- Safdari [44]- Ghasemian [45]- Rashidian [46]- Stromenger [47]- Heydari | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مراجع | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
References (1) Kloos WE. Staphylococcus. In: Mahy BWJ, Collier L, Balows A, Sussman M. Toply & Wilsons Microbiology and Microbial Infection. 9th ed. USA: Hodder Education Publishers; 1998. (2) De Bruijn FJ, Lupski JR, Weinstock GM. The Staphylococcus aureus genome map. In: Iandolo JJ, Stewart GC. Bacterial Genomes: Physical Structure and Analysis. New York: Springer; 1998. (3) Walker T. S. Cocos stain- causing Gram- positive. In: Bahdor A, Alikhani M. Y, Mansouri S. H, Dogahe H. P. Microbiology Walkers. Taheri Kalani M. Tehran: Khosravi publications with Cooperation Dibaj Posted; 2008. p 151- 93. (4) Murray PR, Rosenthal KS, Kobayashi GS,Pfaller MA. Staphylococcus. In: Murray PR, Rosenthal KS, KobayashiGS, Pfaller MA. Medical Microbiology. 4thed. Washington: Mosby; 2002. p 202- 16. (5) Naimi TS, LeDell KH, Boxrud DJ, Groom AV, Steward CD, Johnson SK, et al. Epidemiology and clonality of community- acquired methicillin- resistant Staphylococcus aureus in Minnesota, 1996- 1998. Clin Infect Dis 2001 1;33 (7): 990- 6. (6) Lowy FD. Antimicrobial resistance: the example of Staphylococcus aureus. J clin Invest 2003; 111 (9): 1265- 73. (7) Cohen ML. Epidemiology of drug resistance: implications for a post- antimicrobial Era. Science 1992; 257 (5073): 1050- 55. (8) BarberM, Rozwadowska- DowzenkoM. Infection by penicillin- resistant staphylococci. Lancet 1948; 2 (6530): 641- 4. (9) Kirby WM. Extraction of a highly potent penicillin inactivator from penicillin resistant staphylococci. Science 1944;99 (2579): 452- 3. (10) Ramdani- Bouguessa N, Bes M, Meugnier H, Forey F, Reverdy ME, Lina G, et al. Detection of methicillin- resistant Staphylococcus aureus strains resistant to multiple antibiotics and carrying the Panton- Valentine leukocidin genes in an Algiers hospital. Antimicrob Agents Chemothe r 2006; 50 (3): 1083- 5. (11) Walker, Stuart T. Cocos stain- causing Gram- positive. In: Bahador A, Alikhani MY, Mansouri SH, PiriDogahe H, TaheriKalani M. Walkers Microbiology. Tehran: khosravi publications & Dibaj publications; 2007. p 151- 93. (12) Yilmaz G, Aydin K, Iskender S, Caylan R, Koksal I. Detection and prevalence of inducible clindamycin resistance in staphylococci. J Med Microbiol 2007; 56 (Pt 3): 342- 5. (13) Chambers HF. Coagulase- negative staphylococci resistant to beta- lactam antibiotics in vivo produce penicillin- binding protein 2a. Antimicrob Agents Chemother1987; 31 (12): 1919- 24. (14) Chambers HF. Methicillin resistance in staphylococci: molecular and biochemical basis and clinical implications. Clin Microbiol Rev 1997; 10 (4): 781- 91. (15) Wang Y, Cong- Ming Wu, Li- Ming Lu, Gao- Wa Na Ren, Xing- Yuan Cao, Jian- ZhongShen. Macrolide–lincosamide- resistant phenotypes and genotypes of Staphylococcus aureus isolated from bovine clinical mastitis. Vet Microbiol 2008; 130 (1–2): 118- 25. (16) Ochoa- Zarzosa A, Loeza- Lara PD, Torres- Rodríguez F, Loeza- Angeles H, Mascot- Chiquito N, Sánchez- Baca S, et al. Antimicrobial susceptibility and invasive ability of Staphylococcus aureus isolates from mastitis from dairy backyard systems. Antonie Van Leeuwenhoek 2008; 94 (2): 199- 206. (17) Kumar R, Yadav BR, Singh RS. Genetic determinants of antibiotic resistance in Staphylococcus aureus isolates from milk of mastitic crossbred cattle. CurrMicrobiol 2010;60 (5): 379- 86. (18) NaderiNasab M, Farshadzadeh Z, Yosefi F, Sasacn MS. Determination of inducible resistance to clindamycin in methicillin- resistant staphylococcus aureus and coagulase negative staphylococci. Iran J Microbiol 2008; 1 (3): 25- 30. (19) Merino- Díaz L, Cantos de la Casa A, Torres- Sánchez MJ, Aznar- Martín J. Detection of inducible resistance to clindamycin in cutaneous isolates of Staphylococcus spp. by phenotypic and genotypic methods. Enferm Infecc Microbiol Clin 2007; 25 (2): 77- 81. (20) Heidari M, Momtaz H, Madani M. Detection of the antibiotic resistance genes in Staphylococcus aureus isolated from human infections and bovine mastitis. African JMicrobiol Res 2011; 5 (31): 5745- 49. (21) Momtaz H, Tajbakhsh E, Rahimi E, Momeni M. Coagulase gene polymorphism of Staphylococcus aureus isolated from clinical and sub- clinical bovine mastitis in Isfahan and ChaharmahalvaBakhtiari provinces of Iran. Comp ClinPath 2011; 20: 519– 22. (22) Karamstaji A, Moradi N, Boushehri E, Jahed M, Dadsetan B, Sanginabadi F, et al. Nasal carriage of Staphylococcus aureus and antibiotic resistance patterns in Staff training hospitals treatment of Bandar Abbas. Hormozgan Univ Med J 2009; 12 (2): 95- 101. (23) Bauer AW, Kirby WM, Sherris JC, Turck M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Am J clin Pathol 1966; 45 (4): 493- 6.
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 3,914 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,048 |