
تعداد نشریات | 43 |
تعداد شمارهها | 1,685 |
تعداد مقالات | 13,830 |
تعداد مشاهده مقاله | 32,678,297 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 12,918,362 |
سنتز خارج سلولی نانوذرات نقره توسط باکتری Ralstonia sp. SM8 جدا شده از معدن مس سرچشمه | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
زیست شناسی میکروبی | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مقاله 7، دوره 3، شماره 9، خرداد 1393، صفحه 53-64 اصل مقاله (439.9 K) | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
نویسنده | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مراحم آشنگرف* | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
استادیار میکروبیولوژی، دانشگاه کردستان، ایران | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
چکیده | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مقدمه: روشهای مبتنی بر فناوری زیستی به علت تمیزی و سازگاری بسیار بالا با محیط زیست از جایگاه ویژه ای برخوردار اند. با وجود سمیت بالای نقره، تعداد محدودی از میکروارگانیسمها نه تنها در برابر نقره مقاومت دارند بلکه قادر به احیای آن به شکل نانوذرات نقره نیز هستند. هدف از این تحقیق، جداسازی و معرفی سویههای باکتری بومی بهعنوان زیست واکنشگرهای میکروبی با توانایی سنتز برون سلولی نانوذرات نقره بود . مواد و روشها: 8 سویه باکتری دارای تحمل پذیری بالا نسبت به یون سمی نقره، با استفاده از مشاهدات ریختشناسی و آزمایشهای اولیه تشخیصی بیوشیمیایی از خاکهای معادن مس و طلا جداسازی شدند. سویههای باکتری با محلول نیترات نقره (با غلظت1 گرم در لیتر) با اسیدیته برابر 7، در دمای 28 درجه سانتیگراد بر روی همزن مدور (120 دور در دقیقه) ، به مدت 48 ساعت گرماگذاری شد. بررسی تولید نانوذرات از طریق تغییر رنگ محلول واکنش و روشهای اسپکتروسکوپی، میکروسکوپی و طیف سنجی انجام شد. نتایج: از میان 8 سویه جداسازی شده با تحمل پذیری بالا نسبت به یون نقره، تنها سویه باکتری SM8 ، جدا شده از معدن مس سرچشمه کرمان، قادر به سنتز خارج سلولی نانوذرات نقره بود. سویه منتخب از نظر صفات فیزیولوژیک، بیوشیمیایی و همچنین، فیلوژنی و مولکولی، شناسایی و در جنس Ralstonia ( با شماره دسترسی KF264453 در بانک اطلاعات ژنی NCBI ) قرار داده شد. نتایج به دست آمده از مشاهدات چشمی، اسپکتروفتومتری UV-vis و تصاویر به دست آمده از میکروسکوپ الکترونی SEM و پراش اشعه ایکس ( XRD ) نشان داد که سوپرناتانت باکتری Ralstonia sp. SM8 ، قادر به احیای یون نقره به نانوذرات نقره به شکل خارج سلولی است. نانوذرات نقره تولیدی به شکل کروی و اندازه آنها در ابعاد 20 تا50 نانومتر را بود. بحث و نتیجهگیری: براساس نتایج حاصل از این پژوهش، با استفاده از سوپرناتانت باکتری Ralstonia sp. SM8 ، تولید سریع و خارج سلولی نانوذرات نقره، بدون نیاز به مراحل پیچیده استخراج، میتواند انجام شود. مطالعه حاضر، نخستین گزارش از تولید زیستی نانوذرات نقره در جنس Ralstonia است . | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
کلیدواژهها | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
نانوذرات نقره؛ سنتز زیستی؛ Ralstonia sp. SM8. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
اصل مقاله | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مقدمه کاربرد فناوری در مقیاس اتم و مولکول یکی از فناوریهای[1] نوظهور در قرن حاضر است که آینده اقتصاد جهان را به شدت متاثر خواهد کرد. میکروارگانیسمها ی مختلف شامل: باکتریها، مخمرها، قارچها و اکتینومیستها برای سوخت و ساز و انجام فرآیندهای حیاتی خود از منابع آلی و معدنی موجود در محیط تغذیه میکنند. این ارگانیسمها طی فرآیندهای متفاوت، هنگامی که در معرض یونهای فلزی قرارمیگیرند، آنها را در درون یا بر روی دیواره سلولی خود انباشته کرده و این انباشتگی بیشتر به تولید ذراتی منجر است که در اندازههای نانوذرات بسته بندی میشوند (1). دستیابی به نانو مواد گام نخست در توسعه فناوری نانو است. توسعه روشهای تهیه نانو مواد برای تولید موادی با ترکیب، اندازه معین و توزیع مناسب اندازه ذره[2] و همچنین، پایداری، از محورهای مورد بحث در پژوهشهای اخیر محسوب میشود. در این میان روشهای مبتنی بر فناوری زیستی به علت تمیزی و سازگاری بسیار بالا با محیط زیست از جایگاه ویژه ای برخوردار است (2 و 3). در حال حاضر از نانوذرات نقره بهعنوان یک پوشش انتخابی در ساخت صفحات خورشیدی، باتریهای الکتریکی و گیرندههای نوری استفاده میشود. همچنین، از آنها بهعنوان زیست واکنشگر[3] در واکنشهای شیمیایی و تشخیص سریع انواع سرطانها استفاده میشود (1 و 2). با توجه به خواص ضد میکروبی نانوذرات نقره از آنها در صنایع غذایی، صنایع نساجی، صنایع کاغذسازی، صنایع ساخت لوازم خانگی و همچنین، صنایع ساخت مواد شوینده و بهداشتی استفاده میشود (4). تولید فیزیکی و شیمیایی نانو ذرات نقره علاوه بر تحمیل هزینههای بالا، سختی مسیر سنتز فرآیند و راندمان تولید کم، آلودگیهای زیست محیطی بالایی را به همراه دارد. از سوی دیگر، با توجه به کاربرد رو به رشد نانو ذرات نقره، تمایل به گسترش روشهای سازگار با محیط زیست از طریق توسعه روشهای زیستی با استفاده بیوکاتالیزورهای میکروبی بسیار مورد توجه قرار گرفته است (5). با وجود سمیت نقره برای بسیاری از میکروارگانیسمها، تعداد محدودی از میکروارگانیسمها نه تنها در برابر نقره مقاومت دارند بلکه قادر به احیای آن به شکل نانوذرات نقره نیز هستند. از میان نانوذرات فلزی تولید شده با استفاده از میکروارگانیسمهای مختلف، نانوذره نقره از مهمترین نانو فلزاتی است که بیشترین تحقیقات را در این زمینه به خود اختصاص داده است. بررسیهای انجام شده تاکنون، نشان داده اند که میکروارگانیسمهایی مانند باکتریها، کپکهای رشتهای، مخمرها و اکتینومیستها برای تولید نانوذرات نقره استفاده شده است. اگرچه طیف وسیعی از میکروارگانیسم از قبیل Pseudomonas stutzeri AG259 (6)، . SH09Corynebacterium sp (7)، Lactobacillus sp. (8)، Aeromonas sp. SH10 (9)، Acetobacter xylinum (10)، Bacillus sp. (11)، Morganella sp. (12) و Plectonema boryanum (13) در تولید زیستی نانوذرات نقره بیشتر بهشکل داخل سلولی بکار گرفته شده اند. با این حال، مطالعات انجام شده در زمینه تولید خارج سلولی نانوذرات نقره با استفاده از سوپرناتانت کشت میکروبی محدود به چندین جنس قارچی از جمله کپکهای رشته ای
مواد و روشها مواد شیمیایی و محیطهای کشت نیترات نقره از شرکت سیگما- آلدریچ[4] و پپتون و عصاره مخمر مورد نیاز برای تهیه محیطهای کشت استفاده شده از شرکت مرک[5] خریداری شد. محلولهای استوک در آب مقطر حل شده و پس از فیلتراسیون بهوسیله فیلترهای سرنگی 22/0 میکرونی در دمای 4 درجه سانتیگراد برای مدت 7 روز نگهداری شدند. در تمام مراحل آزمایش از آب مقطر دو بار تقطیر استفاده شد. جداسازی سویههای باکتری با قابلیت تحمل پذیری نسبت به یون نقره برای جداسازی سویههای باکتری تحمل پذیر به یون نقره، نمونههای خاک از معادن مس و طلا واقع در استانهای کرمان و کردستان جمع آوری شدند. از نمونههای خاک جمع آوری شده سری رقت تهیه شد. 100 میکرولیتر از سری رقتهای تهیه شده در محیطهای کشت غنی کننده لوریا- برتانی[6] آگار فاقد نمک سدیم کلراید (پپتون 10 گرم در لیتر، عصاره مخمر 5 گرم درلیتر، آگار 20 گرم در لیتر و اسیدیته برابر 7) که حاوی 100 میلیگرم در لیتر یون نقره بود، کشت شد. پس از 7 روز گرما گذاری در دمای 28 درجه سانتیگراد، سویههای باکتری براساس ویژگیهای ریختشناسی و بیوشیمیایی جداسازی شدند. تحمل پذیری سویههای باکتری جدا شده با روش رقت در آگار[7] تعیین شد (16). برای این منظور به ارلنهای 125 میلیلیتری حاوی 20 میلیلیتر از لوریا- برتانی آگار (فاقد نمک سدیم کلراید) ذوب شده، غلظتهای خاصی از یون نقره (1/0، 2/0، 3/0، 4/0، 5/0، 6/0، 7/0، 8/0، 9/0 و 1 گرم در لیتر) اضافه شده و سپس داخل ظرفهای محیط کشت[8] شیشهای به قطر 8 سانتیمتر ریخته شد. ظرفهای محیط کشت آگاردار در دمای 40 درجه سانتیگراد به مدت 2 ساعت قرار گرفتند تا سطح مرطوب آنها خشک شود. سپس بهوسیله نمونه بردار[9]، 10 میکرولیتر از محیط مایع که میکروب مورد نظر درآن رشد کرده (رشد لگاریتمی) بود و تراکم آن 5/. مک فارلند بود بر روی محیط آگاردار قرار گرفت (میکروب تلقیح شده cfu/ml108× 5/1). پلیتها پس از 7 روز گرما گذاری در 28 درجه سانتیگراد مطالعه شدند. سنتز خارج سلولی نانو ذرات نقره سویههای باکتری در ارلنهای 250 میلیلیتری حاوی 50 میلیلیتر محیط لوریا برتانی فاقد نمک در دمای 28 درجه سانتیگراد بر روی همزن مدور[10] (120 دور در دقیقه) ، به مدت 24 ساعت گرما گذاری شد. محلول نیترات نقره در غلظت نهایی 1 گرم در لیتر یون نقره، به سوسپانسیون کشت اضافه شد. پس از 24 ساعت گرماگذاری اضافی در شرایط رشدی مشابه، در صورت مشاهده تغییر رنگ، توده زیستی با استفاده از سانتریفیوژ با سرعت 5000 دور در دقیقه، در مدت 5 دقیقه جداسازی شد. سپس سوپرناتانت سویه منتخب از نظر تولید خارج سلولی نانو ذرات نقره بررسی شد. برای این منظور سلولها ابتدا در محیط آبگوشتی لوریا برتانی فاقد نمک سدیم کلراید در دمای 28 درجه سانتیگراد و دور همزن rpm120 به مدت 24 ساعت رشد داده شد. پس از برداشت سلولها با سانتریفیوژ یخچالی (12000 دور در دقیقه به مدت 5 دقیقه) از سوپرناتانت کشت باکتریایی، بهعنوان کاتالیزور زیستی برای سنتز خارج سلولی نانوذرات نقره استفاده شد. سوپرناتانت جدا شده کشت باکتری در محیط بافری فسفات و در حضور 1 گرم در لیتر یون نقره در دستگاه همزن با دمای 28 درجه سانتیگراد و با دور rpm 120 به مدت 48 ساعت گرمخانهگذاری شد. ویژگی نانو ذرات تشیکل شده در محلول واکنش زیست تبدیلی، تحلیلهای UV، XRD و SEM شد. شناسایی فنوتیپی و مولکولی سویه باکتری SM8 شناسایی اولیه سویه SM8 براساس مشاهدات ریختشناسی و انجام آزمایشهای بیوشیمیایی (رنگ آمیزی گرم، تولید اسید از گلوکز، آزمایش اکسیداز، آزمایش کاتالاز، آزمایش اکسیداتیو- تخمیر (O/F)، آزمایش حرکت، تولید پیگمان و رشد در شرایط بیهوازی) انجام شد (17). سپس برای تایید جنس سویه یاد شده از تعیین ترادف ژن S rDNA16 استفاده شد. استخراج DNA ژنومی با استفاده از روش جوشاندن انجام شد (18). در این روش سوسپانسیونی از کلونی خالص باکتری در یک میلیلیتر آب دوبار تقطیر استریل تهیه و به مدت 10 دقیقه در بن ماری در حال جوش قرار داده شد. سپس به مدت 5 دقیقه برروی یخ قرار داده و پس از آن در دور g × 3000 به مدت 5 دقیقه سانتریفیوژ شد. به دنبال سانتریفیوژ کردن، 2 میکرولیتر از مایع رویی حاوی DNA به عنوان DNA الگو برای واکنشPCR استفاده شد. تکثیر ژن S rDNA16بهوسیله پرایمرهای همگانی: 8F (5ʹ-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3ʹ) و 1541R (5ʹ-AAGGAGGTGATCCAGCCGCA-3ʹ) براساس اطلاعات جداول 1و 2 انجام شد. پس از انجام شدن PCR، محصول برروی ژل آگاروز 1 درصد در شرایط بافری TAE تحت تاثیر ولتاژ 80 به مدت 1 ساعت الکتروفورز شد. محصول حاصل از PCR (تقریبا کل ترادف ژنی S rDNA16) با استفاده از کیت تخلیص محصول PCR شرکت فرمنتاز، تخلیص و برای تعیین توالی به شرکت فزاپژوه ارسال شد. توالی به دست آمده با استفاده از نرم افزار NCBI BLAST[11]، از نظر میزان تشابه ژنتیکی با سایر گونههای باکتری موجود در بانک ژنومی مقایسه شد. جدول 1- مواد و مقادیر مورد نیاز برای انجام واکنش PCR در سویهSM8
جدول 2- چرخه حراتی واکنش PCR انجام شده برای تعیین جنس
تعیین ویژگی نانو ذرات نقره تشکیل نانوذرات نقره در مخلوط واکنش زیست تبدیلی میکروبی با استفاده از مشاهدات چشمی، آزمایشهای اسپکتروفتومتری UV-vis[12]، تحلیل پراش اشعه ایکس[13] و همچنین، تصویر برداری با میکروسکوپ الکترونی [14]SEM انجام شد. در مرحله اول، تشیکل نانو ذرات با مشاهده تغییر رنگ محلول واکنش حاوی سوپرناتانت کشت باکتری و محلول نیترات نقره (AgNO3) مشخص شد. به منظور تعیین طیف جذبی محلول رویی حاصل از سانتریفیوژ، نمونهها با سرعت ×g 5000 به مدت 5 دقیقه در دمای 4 درجه سانتیگراد سانتریفیوژ شدند. سپس تحلیلهای XRD و SEM با هدف بررسی وضعیت نانو کریستالهای تشیکل شده و همچنین، بررسی شکل و اندازه آنها انجام شد. برای این منظور ابتدا سوپرناتانت عاری از توده زیستی[15] باکتری، از فیلترهای سرنگی 22/0 میکرونی عبور داده شد و سپس با هدف رسوب نانو ذرات نقره نمونهها با سرعت g × 15000 به مدت 30 دقیقه در دمای 4 درجه سانتیگراد، سانتریفیوژ شد. پس از شستشوی رسوب حاصل با آب مقطر دو بار تقطیر استریل، نمونهها در آون 50 درجه سانتیگراد به مدت 24 ساعت خشک شدند.
نتایج جداسازی سویههای باکتری دارای تحمل پذیری بالا به یون نقره با توجه به سمیت یون نقره بر روی سلولهای باکتریایی، شناسایی باکتریهای تحمل پذیر به غلظتهای بالای یون نقره، قدم اول در جهت انتخاب سویه برتر جهت مطالعات زیست تبدیلی یون نقره به نانوذره نقره است. در این راستا، 18 سویه باکتری از خاکهای معادن مس و طلا براساس تکنیک غنیسازی جدا شدند. تحمل پذیری ذاتی این سویهها نسبت به یون سمی نقره بهوسیله روش رقت در آگار تعیین شد (شکل 1).
شکل 1- الگوی تحمل پذیری به یون نقره در سویههای باکتری جدا شده از خاکهای معادن مس و طلا
از بین 18سویه باکتری که براساس ویژگیهای ریختشناسی و انجام آزمایشهای بیوشیمیایی از خاک معادن مس و طلا جداسازی شدند، 8 سویه باکتری (SM2، SM5، SM8، SM10، SM12، KM14، KM15 و KM17) که بالاترین تحمل پذیری را نسبت به یون سمی نقره از خود نشان دادند انتخاب شده (شکل 1) و برای بررسی قابلیت احیای یونهای نقره به نانو ذرات نقره (بهشکل خارج سلولی) در محیط لوریا برتانی فاقد نمک بررسی شدند. غربالگری سویههای باکتری با قابلیت سنتز خارج سلولی نانو ذرات نقره از میان 8 سویه باکتری با قابلیت تحمل پذیری بالا نسبت به یون سمی نقره، تنها سوپرناتانت کشت سویه SM8، جدا شده از معدن مس سرچشمه کرمان، قادر به احیای خارج سلولی یونهای نقره به نانوذرات نقره، در غلظت 1 گرم در لیتر از یون سمی نقره، بود که با ایجاد تغییر رنگ محلول واکنش زیست تبدیلی از سفید به قهوه ای شناسایی شد (شکل 2- قسمت B). در محلول کنترل (نیترات نقره عاری از سوپرناتانت کشت سویه SM8) هیچ تغییر رنگی در محلول واکنش مشاهده نشد (شکل 2- قسمت A). باکتریهایی که قادر به احیای یون نقره هستند، رنگ محلول نیترات نقره را به شکل ارغوانی، قهوه ایی، زرد و خاکستری تغییر میدهند که دلیل ایجاد رنگهای متفاوت، مکانیسمهای متفاوت در احیای زیستی یونهای نقره به نانو ذرات نقره است که به تولید نانوذرات با ابعاد و اشکال متفاوت منجر شده و در نهایت رنگهای مختلفی از نانوذرات ظاهر میشود (19).
شکل 2- محلولهای نیترات نقره (غلظت یون نقره 1 گرم در لیتر، اسیدیته برابر 7) ، عاری از سوپرناتانت (قسمت A) و به دنبال اضافه کردن سوپرناتانت کشت سویه SM8 (قسمت B) ، پس از 48 ساعت گرما گذاری در 28 درجه سانتیگراد روی همزن مدور (120 دور در دقیقه).
تحلیل نمونهها با اسپکتروفتومتری UV-vis، یک پیک جذبی مشخص را در طول موج 430 نانومتر (پیک اختصاصی برای نانوذرات نقره) را نشان داد که بیانگر وجود نانوذرات نقره در محلول واکنش زیست تبدیلی است (شکل 3- B). براساس منابع معتبر، بیشینه پیک جذبی نانوذرات نقره در طول موجهای 400 تا 450 نانومتر است (20). در محلول کنترل (عاری از سوپرناتانت کشت باکتری)، در طول موجهای بین 300 تا 700 نانومتر هیچ پیک جذبی مشاهده نشد (شکل 3- A). در ادامه این پژوهش، تحلیل XRD به منظور اثبات نانوکریستالهای فلزی نقره انجام شد. براساس نتایج به دست آمده که در شکل (4) نشان داده شده است، نانوذرات کریستالی نقره در سطوح 111، 200، 220 و 311 به ترتیب پیکهای با مقادیرº2/38، º4/46، º6/64 و º6/77 را نشان داد که با نمونه استاندارد نانوکریستالهای نقره کاملا همخوانی دارد (21).
شکل 3- طیفهای اسپکتروفتومتری محلولهای نیترات نقره (غلظت یون نقره 1 گرم در لیتر، اسیدیته برابر 7) ، عاری از سوپرناتانت ( A) و به دنبال اضافه کردن سوپرناتانت کشت سویه SM8 ( B) ، پس از 48 ساعت گرما گذاری در 28 درجه سانتیگراد روی همزن مدور (120 دور در دقیقه).
شکل 4- تحلیل پراش اشعه ایکس (XRD) نانو ذرات سنتز شده توسط سویه SM8
شکل 5- میکروگرافهای SEM حاصل از نانوذرات نقره سنتز شده توسط سویه باکتری SM8
تصاویر به دست آمده از میکروسکوپ الکترونی SEM نیز سنتز نانوذرات نقره با ابعاد 20 تا 50 نانومتر و اشکال کروی را نشان داد (شکل 5). پس از قطعی شدن توانایی تولید نانوذرات نقره توسط سویه SM8، شناسایی سویه منتخب با استفاده از روشهای فنوتیپی و مولکولی انجام شد. شناسایی مولکولی سویه باکتریSM8 به دنبال شناسایی اولیه براساس مشاهدات ریختشناسی و آزمایشهای بیوشیمیایی اولیه، برای شناسایی دقیق سویه SM8، به استخراج DNA ژنومی و تکثیر ژن S rDNA16 با استفاده از پرایمرهای همگانی 8F و 1541R اقدام کردیم. همانگونه که در شکل (6-A) مشاهده میشود، محصول PCR در ناحیه 5/1کیلو بازی نمایان شده است که حکایت از خلوص DNA استفاده شده برای تعیین توالی دارد. پس از مشخص شدن توالی ژن S rDNA16سویه یاد شده (شکل 6- B) و بلاست نمودن آن در سایت اینترنتی NCBI، باکتری مورد نطر شناسایی شده و در جنس Ralstonia sp. قرار گرفته است. براساس نتایج حاصل از بلاست (جدول 3) این سویه دارای مشابهت 99 درصدی با سویههای جنس Ralstonia sp. است.
شکل6- (A) الکتروفورز محصول PCR ژنوم باکتریDNA :A. SM8 نشانگر، B: سویه باکتری SM8 تولید کننده نانوذره نقره، C: کنترل منفی. B): توالی نوکلئوتیدی ژن S rDNA16 سویه باکتری SM8.
جدول 3- نتایج حاصل از بلاست کردن سویه باکتری SM8 در سایت اینترنتی NCBI.
بحث و نتیجهگیری جذابیت استفاده از میکروارگانیسمها درتولید نانوذرات فلزی به علت تمیزی وسازگاری بسیار بالا با محیط زیست، توزیع مناسب و یکنواخت ذرات تولید شده، پایداری بالا، انعطاف پذیری بیشتر، انتشار نور بهتر و آسانی تولید است. در دو دهه اخیر غربالگریهای میکروبی زیادی برای تولید زیستی نانوذرات به علت خواص ویژه نوری، شیمیایی، الکتریکی و فوتوالکتریکی آنها انجام شده است که موید استفادههای گوناگون این مواد در زمینههایی چون کاتالیستها، اپتیک، دانش داروهای زیستی، مکانیک، مغناطیس و انرژی است (3). سنتز زیستی نانوذرات نقره یک دستاورد علمی از علم فناوری نانو است که در عرصههای مختلف علوم پزشکی و صنایع مختلف از جمله غذایی، آرایشی و بهداشتی، دامپروری و کشاورزی کاربردهای فراوان دارد (4). اساسا برای اینکه فرآیندهای میکروبی قابلیت صنعتی شدن پیدا کنند باید کم هزینه، دارای عملیات پیوسته و سرعت تولید بالا باشند که در این راستا غربالگری سویههای میکروبی جدید برای نیل به این هدف بسیار حائز اهمیت است. مطالعه اخیر در راستای جداسازی و شناسایی سویههای باکتری بومی با پتانسیل سنتز خارج سلولی نانو ذرات نقره انجام شد. در این پژوهش، 18 سویه باکتری تحمل پذیر نسبت به یون سمی نقره، از نمونههای مختلف خاک جمع آوری از معادن مس و طلا در مناطق مختلف ایران جداسازی شدند. سویههای جدا شده از نظر تحمل پذیری بالا ارزیابی شدند. براساس یافتههای به دست آمده 8 سویه دارای بیشترین تحمل پذیری (بالاتر از 1 گرم در لیتر) نسبت به یون سمی نقره بودند (شکل 1). در ادامه این تحقیق، تولید زیستی تشکر و قدردانی این تحقیق در قالب طرح پژوهشی به شناسه 1391/42377/4 با حمایت مالی معاونت پژوهشی دانشگاه کردستان انجام شده است. بدین وسیله از معاونت پژوهشی دانشگاه کردستان تشکر و قدردانی میشود.
[1]. Technology [2]. Monodispersity [3]. Biocatalyst [4]. Sigma-Aldrich, St. Louis, MO [5]. E. Merck, Darmstadt, Germany [6]. Luria Bertani [7]. Agar dilution method [8]. Plates [9]. Sampler [10]. Shaker [11]. http://www. ncbi. nlm. nih. gov/blast [12]. Analytik Jena's spectrophotometer SPECORD 210,Carel Zeiss Technology, Germany [13]. X-ray Diffractometer, D8ADVANCE, Bruker, Germany [14]. KYKY-EM3200, KYKY Technology Development Ltd. , China [15]. Biomass [xvi]. Accession number [xvii]. NCBI [xviii]. Faghri et al | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
مراجع | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
References (1) Thakkar KN, Mhatre SS, Parikh RY. Biological synthesis of metallic nanoparticles. Nanomedicine: NBM2009; 6(2): 257-62. (2) Salata OV. Applications of nanoparticles in biology and medicine. J Nanobiotech 2004; 2(3): 1-6. (3) Narayanan KB, Sakthivel N. Biological synthesis of metal nanoparticles by microbes. Adv Colloid Interface Sci 2010; 156(1-2): 1-13. (4) Souza GIH, Marcato PD, Durán N, Esposito E. Utilization of Fusarium oxysporumin the biosynthesis of silver nanoparticles and its antibacterial activities. In IX National Meeting of Environmental Microbiology; Curtiba, PR (Brazil); 2004; Abstract pag. 25. (5) Mandal D, Bolander ME, Mukhopadhyay D, Sarkar G, Mukherjee P. The use of microorganisms for the formation of metal nanoparticles and their application. Appl Microbiol Biotechnol 2006; 69(5): 485–92. (6) Klaus T, Joerger R, Olsson E, Granqvist CG. Silver-based crystalline nanoparticles, microbially fabricated. Proc Natl Acad Sci USA 1999; 96(24): 13611–4. (7) Zhang H, Li Q, Lu Y, Sun D, Lin X, Deng X, et al. Biosorption and bioreduction of diamine silver complex by Corynebacterium. J Chem Technol Biotechnol 2005; 80(3): 285–90. (8) Nair B, Pradeep T. Coalescence of nanoclusters and formation of submicron crystallites assisted by Lactobacillus strains. Cryst Growth Des 2002; 2(4): 293-8. (9) Mouxing FU, Qingbiao LI, Daohua SUN, Yinghua LU, Ning HE, Xu DENG, et al. Rapid preparation process of silver nanoparticles by bioreduction and their characterizations.Chinese J Chem Eng 2006; 14(1): 114-7. (10) Barud HS, Barrios C, Regiani T, Marques RFC, Verelst M, Dexpert-Ghys J, et al. Self-supported silver nanoparticles containing bacterial cellulose membranes. Mat Sci Eng C 2008; 28(4): 515-8. (11) Pugazhenthiran N, Anandann S, Kathiravan G, Kanna- ian N, Prakash U, Crawford S, et al. Microbial synthesis of silver nanoparticles by Bacillus sp. J Nanopart Res 2009; 11(7): 1811-5.
(12) Parikh RP, Singh S, Prasad BLV, Patole MS, Sastry M, Shouche YS. Extracellular synthesis of crystalline silver nanoparticles and molecular evidence of silver resistance from Morganella sp.: towards understanding biochemical synthesis mechanism. Chem biochem 2008; 9(9): 1415-22. (13) (13) Lengke MF, Fleet ME, Southam G. Biosynthesis of silver nanoparticles by filamentous cyanobacteria from silver (I) nitrate complex. Langmuir 2007; 23(5): 2694–9. (14) Shahverdi AR, Fakhimi A, Shahverdi HR, Minaian S. Synthesis and effect of silver nanoparticles on the antibacterial activity of different antibiotics against Staphylococcus aureus and Escherichia coli. Nanomedicine 2007; 3(2): 168-71. (15) Faghri ZN, Salouti M. Extracelluar biosynthesis of silver nanoparticles using cell filtrate of Streptomyces sp. ERI-3. Scientia Iranica 2011; 18(6): 1631-5. (16) Washington JA, Sutter VL. Dilution susceptibility test: agar and macro-broth dilution procedures. In: Lennette EH, Balows A, Hausler JR, WJTruant, J.(Eds.) , Manual of Clinical Microbiology, 3 rd ed., Washington DC; American Society for Microbiology; 1980. (17) Holt JG, Krieg NR, Sneath PHA, Staley JT, Williams ST. Bergey ' s manual of determinative bacteriology. 9th ed. Baltimore, Maryland; Williams and Wilkins; 1994. (18) Malorny B, Hoorfar J, Bunge C, Helmuth R. Multicenter validation of the analytical accuracy of Salmonella PCR: towards an international standard. Appl Environ Microbiol 2003; 69(1): 290-6. (19) Sondi I, Salopek-Sondi B. Silver nanoparticles as antimicrobial agent: a case study on E. coli as a model for Gram-negative bacteria. J Colloid Interface Sci 2004; 275(1): 177-82. (20) Kalimuthu K, Suresh Babu R, Venkataraman D, Bilal M, Gurunathan S. Biosynthesis of silver nanocrystals by Bacillus licheniformis. Colloids Surf B Biointerfaces 2008; 65(1): 150-3. (21) Magudapathy P, Gangopadhyay P, Panigrahi BK, Nair KGM, Dhara S. Electrical transport studies of Ag nanocrystallites embedded in glass matrix. Physics B 2001; 299(1-2): 142-6. (22) Konishi Y, Nomura T, Tsukiyama T, Saitoh N. Microbial preparation of gold nanoparticles by anaerobic bacterium. Trans Mater Res Soc Jpn 2004; 29(5): 2341–3. (23) Slawson RM, Vandyke MI, Lee H, Trevor JT. Germanium and silver resistance, accumulation and toxicity in microorganisms. Plasmid 1992; 27(1): 72–9. (24) Kowshik M, Ashtaputre S, Kharrazi S, Vogel W, Urban J, Kulkarni S, et al. Extracellular synthesis of silver nanoparticles by a silver - tolerant yeast strain MKY3. Nanotechnology 2003; 14(1): 95-100. (25) Ahmad A, Mukherjee P, Senapati S, Mandal D, Khan MI, Kumar R, et al. Extracellular biosynthesis of silver nanoparticles using the fungus Fusarium oxysporum. Coll Surf B 2003; 28(4): 313–8. (26) Bhainsa KC, D'Souza SF. Extracellular biosynthesis of silver nanoparticle using the fungus Aspergillus fumigates. Colloids Surf B Biointerfaces 2006; 47(2): 160-4. (27) Khosravi A, Shojaosadati SA. Evaluation of silver nanoparticles produced by fungus Fusarium oxysporum. Int J Nanothechnol 2009; 6(10-11): 973-83. (28) Ahmad A, Senapati S, Islam Khan M, Kumar R, Ramani R, Srinivas V, et al. Intracelluar synthesis of gold nanoparticles by a novel alkalotolerant actinomycete, Rhodococcus sp. Nanotechnology 2003; 14(7): 824-8.
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 4,451 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,249 |