پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 44 |
| تعداد شمارهها | 1,851 |
| تعداد مقالات | 14,981 |
| تعداد مشاهده مقاله | 41,753,532 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 16,336,592 |
Use of intron-exonic marker in assessment of genetic diversity of two subspecies of Thymus daenensis | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Taxonomy and Biosystematics | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| مقاله 5، دوره 5، شماره 16، بهمن 2013، صفحه 41-54 اصل مقاله (435.96 K) | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| نوع مقاله: Original Article | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| نویسندگان | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Ahmad Ismaili1؛ Farzaneh Mojiri* 1؛ Seyedeh Zahra Hosseini2 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 1Department of Agronomy and Plant Breeding, Faculty of Agriculture, Lorestan University, KhoramAbad, Iran | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 2Department of Plant Biology, Faculty of Basic Sciences, Behbahan Khatam Alanbia University of Technology, Behbahan, Iran | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| چکیده | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Study of genetic diversity in medicinal plant is very important for improvement and evolutionary variations. In this study, assessment of genetic diversity in two subspecies of Thymus daenensis was evaluated, using intron-exonic markers. Thirty primers produced 633 polymorphic bands (98% polymorphism). The highest polymorphic information content (PIC) included ISJ5 and ISJ9 primers and the lowest PIC also included IT15-32 primer. The highest marker index (MI) produced by IT10-6 primer. Results of Analysis of Molecular Variance (AMOVA) showed that intra-sub specific variation was more than inter-sub specific variation. Dendrogram obtained from Cluster analysis, using NTSYS-pc software and UPGMA method based on Dice's similarity matrix, divided accessions into 4 groups. The maximum range of genetic similarity was observed between two accessions of sub-species daenensis. Two accessions of Fars and Semnan formed a separate group. Results showed that clustering based on molecular data and principal coordinate analysis had a medium alignment. Grouping based on cluster analysis also could separate two subspecies of Thymus daenensis. Results obtained from this study showed that intron-exonic markers had an effective potential in assessment of genetic relationships between the two sub-species of daenensis. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| کلیدواژهها | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Thymus daenensis؛ Genetic Diversity؛ Polymorphism | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| اصل مقاله | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
مقدمه خانواده Lamiaceae (نعناعیان) یکی از مهمترین تیرههای گیاهی با پراکنش جهانی و نیازهای بومشناختی بسیار متفاوت از اهمیت خاصی برخوردار است. اغلب نعناعیان تولید کننده ترپنها و ترکیبات مفید دیگر هستند که اغلب در غدد اپیدرمی اندامهای هوایی ذخیره میشوند. آویشن (Thymus spp.) یکی از مهمترین جنسهای این خانواده در جهان است. اصلاح آویشن به دلیل تنوع ژنتیکی وسیع، دارا بودن گونههای فراوان و نبود موانع ژنتیکی در هیبریداسیون موفق بین آنها، میتواند توسط روشهای اصلاحی متداول مانند انتخاب به سادگی صورت پذیرد. یکی از گونههای انحصاری آویشن در ایران آویشن دنایی با نام علمی Thymus daenensis Celak. است. این گونه به صورت بومزاد (endemic) در مناطق گستردهای از ایران به ویژه در مناطق غربی و مرکزی رویش دارد. این گیاه دارای برگهای نیزهای، تیپ رویشی ایستاده و ساقه چوبی است. دو ترکیب تیمول و کارواکرول از مهمترین ترکیبات موجود در آویشن دنایی است (Alvandi, 1996). در مطالعهای دیگر، میزان تیمول و کارواکرول در ترکیبات آویشن دنایی را به ترتیب 9/73 و 7/6 درصد به دست آمد (Sajjadi and Khatamsaz, 2003). این گیاه به صورت سنتی به عنوان ضد نفخ، هضم کننده غذا، ضد اسپاسم، ضد سرفه و خلطآور در درمان سرماخوردگی در ایران مصرف میشود (Zargari, 1990). در علم اصلاح نباتات، آگاهی از میزان تنوع و فاصله ژنتیکی بین افراد، در انتخاب والدین مناسب برای تولید هیبریدهای برتر بسیار با اهمیت است، ضمن اینکه تنوع ژنتیکی از ارکان اصلی کشاورزی پایدار محسوب میشود Kumar, 1999)؛ Pullman and Sliper, 2001؛ (Sharma et al., 2002. بررسی تنوع ژنتیکی با روشهای متفاوتی امکانپذیر است که از میان این روشها، نشانگرهای مولکولی مبتنی بر واکنش زنجیرهای پلیمراز (PCR, Polymerase Chain Reaction) روشی قدرتمند و مؤثر برای شناسایی چندشکلی DNA و بررسی تنوع ژنتیکی است. این نشانگرهای مولکولی وابسته به DNA تحت تأثیر شرایط محیطی قرار نمیگیرند و تعدادی از آنها را به راحتی میتوان در کل ژنوم جستجو کرد (Chawla, 2003). نشانگر کاملاً تصادفی RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA) یکی از نشانگرهای مبتنی بر PCR است که در بررسی تنوع ژنتیکی بیشتر گونههای گیاهی استفاده شده است. اما تحلیل ژنتیکی گیاهان با ژنوم بزرگ و پیچیده با این نشانگر چندان مناسب نیست. به همین دلیل، نوعی از نشانگرهای مولکولی مبتنی بر PCR توسط Weining و Langridge (1991) طراحی شد که به این نوع نشانگرها، نشانگرهای نیمهتصادفی ISJ (Intron-exon Splice Junction) میگویند. اطلاعات بیشتر از این نشانگرها توسط Rafalski و همکاران (1997) تکمیل شد. آغازگرهای ISJ دارای توالیهای 9 تا 18 نوکلئوتیدی هستند که بر اساس نواحی برش اتصال اگزون-اینترون به دو گروه از آغازگرهای مکان هدف اگزون (ET: exon targeting) و مکان هدف اینترون (IT: intron targeting) تقسیمبندی میشوند. در آغازگرهای ET انتهای 5َ آغازگر اختصاصی است که با نواحی حفاظتشدهای از IT اتصال مییابند و نواحی اگزونی را تکثیر میکنند اما در آغازگرهای IT انتهای 3َ اختصاصی است و به نواحی حفاظتشده مرز بین اگزون-اینترون اتصال مییابند و اینترونها را تکثیر میکنند Rafalski et al., 1997)؛ Gawel et al., 2002). بنابراین، آغازگرهای گروه IT در تکثیر قطعات از دقت و کارآیی بیشتری برخوردارند. در آغازگرهای ISJ بخش نخست بیانگر توالیهای حفاظت شده اگزون-اینترون است، اما Przetakiewicz و همکاران (2002) و Nowosielski و همکاران (2002) بیان کردند که بخش دوم این آغازگرها به صورت تصادفی طراحی میشوند، بدین صورت که آغازگرهای 9 نوکلئوتیدی دارای یک باز، آغازگرهای 10 نوکلئوتیدی دارای سه باز، آغازگرهای 12 نوکلئوتیدی دارای پنج باز، آغازگرهای 15 نوکلئوتیدی دارای هفت باز، آغازگرهای 16 نوکلئوتیدی دارای 9 باز و در آغازگرهای 18 نوکلئوتیدی نیز 9 باز از توالی آغازگرهای آنها به صورت تصادفی است. به همین دلیل به آنها آغازگرهای نیمهتصادفی میگویند. آغازگرهای 10 نوکلئوتیدی ISJ از نظر دمای اتصال مشابه آغازگرهای RAPD بوده، میتواند در ترکیب با آنها استفاده شود. بر اساس بررسیهای پیشین، آغازگرهای ISJ روی گیاهانی مانند برنج توسط Hashemi-Petroudi و همکاران (2010)، گندم دوروم توسط Frahani و Arzani (2004)، شبدر ایرانی توسط Samiei و همکاران (2008) شده است. اما تاکنون مطالعهای در مورد تنوع ژنتیکی گونههای آویشن با نشانگر ISJ در خارج و داخل کشور صورت نگرفته است. تنوع ژنتیکی آویشن گونه دنایی با نشانگرهای RAPD و ISSR شده است Rahimmalek et al., 2009)؛ Rustaii et al., 2009). همچنین، تنوع بومشناختی، ریختاری، فیتوشیمیایی و شیمیوتایپی این گونه به صورت جداگانه و یا همراه با چند گونه دیگر آویشن بررسی شده است که در زیر به چند نمونه از آنها اشاره شده است: در پژوهشی، Rahimmalek و همکاران (2009) تنوع ژنتیکی و اختلافات جغرافیایی 17 توده آویشن دنایی را که از مناطق مختلف ایران جمعآوری شده بود با نشانگر ISSR بررسی کردند. 15 آغازگر انتخاب شده از کل 256 نوار، 228 نوار چندشکل (9/88 درصد) تولید کرد. دندروگرام حاصل از روش UPGMA.(Unweighted Pair Group Method with Arthmetic Mean Analysis) و ضریب تشابه جاکارد، تودهها را در دو گروه قرار داد. گروه اول تودههای جمعآوری شده از زاگرس مرکزی و گروه دوم تودههای مربوط به دو دامنه شمال غربی و جنوب غربی زاگرس بود که به ترتیب Tc و Te نامیده شدند. نتایج نشان داد که تنوع و هتروزیگوسیتی مورد انتظار در گروه Tc بیشتر بود، بنابراین، مرکز پیدایش (center of origin) و مرکز تنوع (center of diversity) این گونه در زاگرس مرکزی معرفی شد. در مطالعهای دیگر، Rustaii و همکاران (2009) به بررسی خصوصیات کمّی ژرمپلاسم 10 توده آویشن دنایی از غرب کشور در مرحله گلدهی کامل پرداختند. جمعیتهای مطالعه شده پس از ترسیم دندروگرام به روش تجزیه خوشهای با نرمافزار آماری SPSS در چهار گروه قرار گرفتند که دو جمعیت اراک و ملایر در یک گروه، جمعیتهای همدان 1 و لرستان در گروه دیگر و جمعیتهای دنا و همدان 2 به طور مجزا، هر یک در گروههای دیگری قرار گرفتند. اما دو جمعیت اراک و ملایر به دلیل شرایط مطلوبتر دارای خصوصیات رشدی بارزتری نسبت به سایرین بوده، از این جهت برای کارهای اصلاحی ترجیح داده میشوند. در پژوهشی دیگر، Ziaei Nasab و همکاران (2012) تنوع کاریوتیپی 16 جمعیت از
مواد و روشها مواد گیاهی شامل 20 توده آویشن دنایی بود که از مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور در کرج تهیه شد. این تودهها از دو زیرگونه T. daenensis subs daenensis وT. lancifolius subs daenensis بودند که از استانهای اصفهان، سمنان، فارس، قزوین، کردستان، لرستان و مرکزی جمعآوری شده بودند (جدول 1).
جدول 1- نام تودهها همراه با زیرگونه، منشأ جغرافیایی و کد هرباریومی آنها. خط تیره به معنای نامشخص بودن منشأ و کد هرباریومی است.
در ابتدا، برای استخراج DNA ژنومی، روشهای مختلف استخراج DNA از برگهای جوان آویشن آزمایش شد و سرانجام Mojiri و همکاران (2010) روش استخراج Khanuja و همکاران (1999) با اندکی تغییر را مناسبترین روش استخراج تشخیص دادند. برای تعیین کمّیت و کیفیت DNA استخراج شده، از روش اسپکتروفتومتری (بیوفتومتر مدل اپندورف) استفاده شد. برای بررسی کیفیت با این روش نمونههایی که جذب آنها بین 8/1-2 بود انتخاب شدند. همچنین، برای بررسی بیشتر کیفیت DNA استخراج شده و بررسی عدم شکستگی (smear) مولکول، نمونهها بر روی ژل آگاروز 8/0 درصد با بافر TAE 1X و ولتاژ 90 ولت الکتروفورز شدند. در نهایت، غلظت DNAهای مناسب برای واکنش زنجیرهای پلیمراز به 10 نانوگرم در میکرولیتر رسید. واکنش PCR در حجم 15 میکرولیتر برای تمامی نمونهها بهینه شد. مواد واکنش PCR شامل: 5/4 میکرولیتر DNA با غلظت 10 نانوگرم در هر میکرولیتر، 75/0 میکرولیتر آغازگر با غلظت 5/0 میکرومولار، 7 میکرولیتر آب مقطر دوبار تقطیر و 75/2 میکرولیتر کیت PCR بود. برنامه دستگاه PCR به علت اختصاصی بودن قسمتی از توالی آغازگرهای ISJ Weining and Henry, 1995)؛ Rafalski et al., 1997؛ (Przetakiewicz et al., 2002 در دو چرخه دمایی مطابق با روش Przetakiewicz و همکاران (2002) در دستگاه ترموسایکلر مدل اپندورف انجام شد. ابتدا، به مدت 5 دقیقه در 94 درجه سانتیگراد عمل تک رشتهای شدن اولیه (denaturation) انجام شد. سپس در هفت چرخه اولیه، دمای اتصال آغازگر دو درجه سانتیگراد و در 33 چرخه بعدی شش درجه سانتیگراد بالاتر از دمای ذوب آغازگر در نظر گرفته شد. در تمامی چرخهها، تک رشتهای شدن به مدت 40 ثانیه و در دمای 94 درجه سانتیگراد، اتصال آغازگر به مدت یک دقیقه و مرحله سنتز به مدت دو دقیقه در دمای 72 درجه سانتیگراد صورت گرفت. برای اطمینان از سنتز کامل تمامی رشتهها پس از انجام 40 چرخه، یک مرحله 10 دقیقهای با دمای 72 درجه سانتیگراد اضافه گردید که باعث تکثیر نهایی رشتههایDNA گردید. سرانجام، نمونههای DNA از دستگاه خارج شد. برای بررسی محصولات تکثیر شده PCR، نمونهها بر روی ژل آگاروز 5/1 درصد با بافر TAE 1X و ولتاژ 90 ولت به مدت 90 دقیقه در دستگاه الکتروفورز بارگذاری شدند. برای تعیین حدود اندازه نوارها روی ژل، از اندازه نشانگر 100 جفت باز و یک کیلو باز در هر دو طرف ژل استفاده شد. برای مشاهده نوارها عکسبرداری زیر نور UV به وسیله دستگاه ژلداک مدل UviTech صورت گرفت. در این پژوهش، از 30 آغازگر ISJ استفاده شد که آغازگرهای شمارههای 1 تا 16 آغازگر IT و آغازگرهای شمارههای 17 تا 30 آغازگرهای ET بودند (جدول 2). حروف پُر رنگ توالی آغازگرها بیانگر توالیهای حفاظت شده اگزون-اینترون است اما بخش دوم این آغازگرها تصادفی طراحی میشوند. برای تحلیل نوارها، بر مبنای وجود و عدم وجود نوار به ترتیب کد یک و صفر به آنها اختصاص داده شد. برای ترسیم دندروگرام به روش تجزیه خوشهای از نرمافزار NTSYS-pc استفاده شد. تجزیه مختصات اصلی (PCA, Principal Coordinate Analysis) نیز برای برای توصیف بهتر روابط ژنتیکی بین و درون زیرگونههای آویشن دنایی با نرمافزار GenAlex استفاده شد. تجزیه واریانس مولکولی (AMOVA:Analysis of Molecular Variance). برتی تعیین تنوع ژنتیکی درون و بین زیرگونهها با نرمافزار GenAlex نسخه 4/6 انجام شد. با این تحلیل، اجزای واریانس محاسبه و سهم هر یک از آنها در تنوع کل تعیین میشود. میزان اطلاعات چندشکلی (PIC: Polymorphic Index Content) و شاخص نشانگر (MI: Marker Index) با فرمول PIC=∑ [2pi (1-pi)] محاسبه شد که pi فراوانی نوار iام است (Thimmappaiah et al., 2008). شاخص نشانگر از حاصل ضرب محتوای اطلاعات چندشکلی برای هر آغازگر در تعداد کل نوارها برای هر آغازگر و درصد چندشکلی هر آغازگر به دست میآید. شاخص نشانگر علاوه بر مزایای PIC، تعداد کل نوارها و نسبت چندشکلی را نیز در نظر گرفته، پتانسیل هر آغازگر برای تولید نوار بیشتر را نشان میدهد (Anderson et al., 1993؛ (Powell et al., 1996.
نتایج در پژوهش حاضر، آغازگرهای به کار رفته درصد چندشکلی بالایی (98 درصد) را نشان دادند. به بیان دیگر، از مجموع نوارهای تولید شده به وسیله 30 آغازگر، 619 نوار چندشکل و 14 نوار تک شکل بودند. از بین آغازگرهای استفاده شده، آغازگر ET12-30 و ET18-6 به ترتیب بیشترین و کمترین درصد چندشکلی را تشکیل دادند. متوسط تعداد کل نوارها به ازای هر آغازگر 1/21 عدد و برای هر توده 65/31 عدد بود. همچنین، بیشترین میزان اطلاعات چندشکلی را آغازگرهای ISJ5 و ISJ9 و کمترین مقدار را IT15-32 تشکیل داد. شاخص نشانگر شاخصی است که پتانسیل آغازگر را جهت تولید بیشترین نوار نشان میدهد که آغازگرهای IT10-6 و ET18-6 به ترتیب بیشترین و کمترین شاخص نشانگر (MI) را به خود اختصاص دادند (جدول 2).
جدول 2- مشخصات آغازگرها از نظر توالی، تعداد کل نوارها، نوارهای چندشکل، درصد چندشکلی و دیگر شاخصهای تفکیک
در این پژوهش، بر اساس دادههای حاصل از نشانگر ISJ دندروگرام تجزیه خوشهای به روش UPGMA و ماتریس تشابه دایس با نرمافزار
شکل 1- دندروگرام حاصل از تجزیه خوشهای دو زیرگونه آویشن دنایی (Thymus daenensis) بر اساس روش UPGMA به کمک آغازگرهای نیمهتصادفی ISJ با نرمافزار NTSYS-pc.
نتایج حاصل از گروهبندی با روش UPGMA و ضریب تشابه دایس، جمعیتهای آویشن دنایی را به چهار گروه تقسیم کرد. گروه اول بیشترین توده از هر دو زیرگونه آویشن دنایی را به خود اختصاص داد. در گروه دوم چهار توده آویشن دنایی T. daenensis subs lancifolius قرار داشت. گروه سوم آویشن دنایی T. daenensis subs lancifolius از استان فارس و گروه چهارم آویشن T. daenensis subs daenensis از استان سمنان را تشکیل داد. بیشترین شباهت (70 درصد) بین دو توده T. daenensis subs daenensis (شمارههای 5 و 6) از قزوین و لرستان دیده شد. نتایج گروهبندی حاصل از تجزیه خوشهای با منشأ جغرافیایی تا حدود قابل توجهی مطابقت داشت. تجزیه مختصات اصلی (Principal Coordinate Analysis) حالت تعمیم یافتهای از تجزیه مؤلفههای اصلی (PCA) است که در آن از شباهت بین افراد استفاده میکند. هدف از این تجزیه ساخت پلاتهای گرافیکی با ابعاد کمتر از دادهها است. بنابراین، هر ژنوتیپ توسط نقطهای در فضای اقلیدسی نمایش داده میشود و ژنوتیپهایی که شباهت بیشتری به یکدیگر دارند نزدیک یکدیگر قرار میگیرند (Farshadfar, 1997). نتایج نشان داد که دو مختصات اول 24/60 درصد از واریانس کل را بیان کردند که سهم هر کدام به ترتیب 51/36 و 73/23 درصد بود. آرایش تجمعی تودههای آویشن دنایی در شکل 2 نشان داده شده است. در این بررسی، نتایج گروهبندی تجزیه مختصات اصلی گروهبندی تجزیه خوشهای را تأئید کرد و به خوبی توانست دو زیرگونه آویشن دنایی را از هم تفکیک نماید (شکل 2).
شکل 2- نمودار دو بعدی تجزیه مختصات اصلی تودههای آویشن دنایی (Thymus daenensis) بر اساس نشانگرهای ISJ به کمک نرمافزار GenAlex. اعداد 1 تا 20 شماره تودههای آویشن دنایی مطابق با جدول 1 است.
Schaut و همکاران (1997) از تجزیه مختصات اصلی با استفاده از دادههای به دست آمده از نشانگر AFLP نشان دادند که این تجزیه، اطلاعات حاصل از تجزیه خوشهای را تأیید میکند و به خوبی میتواند ارقام دو ردیفه و شش ردیفه جو را از همدیگر به صورت گرافیکی متمایز نماید. نتایج تجزیه واریانس مولکولی بیانگر تنوع قابل توجه درون دو زیرگونه آویشن دنایی نسبت به بین زیرگونهها بود. علت را شاید بتوان به عوامل مؤثر در تغییرات ژنتیکی نظیر جهش، مهاجرت ژن یا ژنوتیپ در اثر عوامل مختلف نسبت داد. نتایج اختلاف معنیداری در سطح 5 درصد بین اجزای واریانس نشان داد (جدول 3). همچنین، با استفاده از نرمافزار GenAlex مشخص شد که بیشترین درصد چندشکلی را T. daenensis subs lancifolius با 63/90 درصد نسبت به جدول 3- تجزیه واریانس مولکولی دو زیرگونه آویشن دنایی (Thymus daenensis) با نرمافزار GenAlex، *: معنیدار در سطح 5 درصد (p=0.036).
نتیجهگیری و بحث در پژوهش حاضر، برای نخستین بار تنوع ژنتیکی دو زیرگونه آویشن دنایی با نشانگرهای اینترون- اگزون بررسی شد. این نشانگرها به خوبی توانستند 20 توده آویشن دنایی را به دو زیرگونه تقسیم کنند. نتایج تجزیه خوشهای به روش UPGMA و ضریب تشابه دایس نشان داد که بیشترین شباهت ژنتیکی (70 درصد تشابه) بین دو توده آویشن از استانهای قزوین و لرستان بوده است که علت را میتوان در یکسان بودن نوع زیرگونه (T. daenensis subs daenensis) دانست. جدا بودن دو توده آویشن دنایی استانهای فارس و سمنان هر کدام در یک گروه جداگانه و دور از سایر گروهها را میتوان به این علت دانست که مرکز پیدایش و تنوع آویشن دنایی بیشتر در مرکز و غرب ایران است که استانهای فارس و سمنان را در بر نمیگیرد. متفاوت بودن شرایط اقلیمی این دو استان نسبت به سایر استانها با شرایط سردسیری (اصفهان، قزوین، کردستان، لرستان و مرکزی) دلیل دیگری میتواند باشد. بنابراین، با اینکه همگی تودهها از یک گونه آویشن بودهاند اما متناسب با شرایط آب و هوایی از هم تفکیک شدهاند. بیشترین تعداد تودههای آویشن در یک گروه دندروگرام قرار گرفتهاند که از هر دو زیرگونه آویشن دنایی هستند و شامل نمونههای استانهای سردسیری هستند. به بیان دیگر، نشانگرهای اینترون-اگزون توانستهاند تا حدودی تودهها را از نظر منشأ جغرافیایی تفکیک کنند. این مسأله نشان میدهد که تنوع ژنتیکی تودههای آویشن دنایی تا حدودی تابع الگوی پراکنش جغرافیایی است. قرار گرفتن تودههای آویشن استان مرکزی در دو گروه متفاوت دندروگرام بیانگر تنوع ژنتیکی بالا در استان محل جمعآوری است که میتوان این طور بیان کرد که در گروهبندی آنها اولویت بیشتر بر اساس نوع زیرگونه بوده است تا منشأ جغرافیایی. در این مطالعه، آغازگرهای استفاده شده چندشکلی بالایی (98 درصد چندشکلی) را در بین تودههای آویشن دنایی از خود نشان دادند که این از مزایای آغازگرهای ISJ به کار رفته است. تعداد نوار چندشکل به ازای هر آغازگر 63/20 عدد بود. Nowosielski و همکاران (2002) در مطالعهای بر روی تنوع ژنتیکی ارقام لوبیا با استفاده از آغازگرهای نیمهتصادفی، متوسط تعداد نوار به ازای هر ژنوتیپ را 5/11 عدد گزارش کردند. Rafalski و همکاران (2002) متوسط تعداد نوار تولید شده به ازای هر یک از ژنوتیپهای چاودار را 9/8 عدد برآورد نمودند. در مطالعهای دیگر، Gawel و همکاران (2002) نیز میانگین تعداد قطعات تکثیر شده به ازای هر یک از آغازگرهای نیمهتصادفی را 14 عدد گزارش کردند. میزان اطلاعات چندشکلی یکی از شاخصهای مهم برای مقایسه نشانگرهای مختلف از نظر قدرت تمایز به شمار میرود. مقادیر بالای آنها دلالت بر چندشکلی زیاد در یک جایگاه نشانگری دارد که در تفکیک و تمایز افراد نقش به سزایی دارد. بنابراین، نشانگرهایی با PIC بالا برای تمایز ژنوتیپهایی با خویشاوندی نزدیک اهمیت بالایی دارند. نتایج به دست آمده در این تحقیق نشان داد که از میان آغازگرهای به کار رفته، آغازگر IT10-6 بیشترین شاخص نشانگر و به بیان دیگر، توان پتانسیل بالا برای تولید حداکثر نوار را داراست. میانگین میزان اطلاعات چندشکلی نیز 34/0 برآورد گردید که نشاندهنده تنوع ژنتیکی شایان توجهی در تودههای آویشن دنایی است. تجزیه مختصات اصلی ابزار دیگری برای نشان دادن نحوه پراکنش تودههاست که به عنوان روشی مکمل برای تجزیه خوشهای به کار میرود. نتایج حاصل از این آزمون به خوبی توانست دو زیرگونه آویشن دنایی را از هم تفکیک کند. Melchinger (1993) گزارش کرد که در تجزیه مختصات اصلی زمانی که سه مؤلفه اول بیش از 25 درصد از کل تغییرات را تبیین نمایند توصیف صحیحی از روابط موجود بین ژنوتیپها را ارائه میدهد. به طور کلی، فاصله جغرافیایی و جریان ژنی بین جمعیتها تعیین کننده فاصله ژنتیکی تودههاست. آزمون دیگری به نام تجزیه واریانس مولکولی بر روی دادهها انجام شد که نتایج حاصل از آن بیانگر هتروزیگوتی بالایی بین افراد درون یک زیرگونه نسبت به تنوع بین دو زیرگونه بود. علت شباهت ژنتیکی زیاد بین دو زیرگونه آویشن به خاطر این است که هر دو به یک گونه آویشن متعلق هستند. در جمعیتهای دگرگُشن، هتروزیگوسیتی بالایی وجود دارد که این امر فرصتی برای سازگاری و تکامل در آن جمعیت ایجاد میکند، بنابراین، وجود تنوع درون چنین جمعیتهایی امری طبیعی است. چنین الگوی ساختار ژنتیکی در سایر گیاهان دگرگُشن نیز تأیید شده است. Yavari و همکاران (2012) در بررسی تنوع ژنتیکی بین و درون جمعیتهای آویشن آذربایجانی با نشانگر RAPD بیان کردند که نتایج تجزیه واریانس مولکولی بیانگر تنوع بالای درون جمعیتها است که علت را میتوان به دگرگُشنی و جریان ژنی بالا نسبت داد. در پژوهش Dababneh (2007) بر روی تنوع ژنتیکی سه گونه آویشن با سه آغازگر RAPD انجام شد نشان داده شد که ارتباط خویشاوندی نزدیکتری بین دو گونه T. vulgaris Jo 276 و T. boveii Jo 856 نسبت به گونه T. broussonetii وجود دارد. دادههای حاصل از نشانگر RAPD نشان داد که این سه گونه با هر سه آغازگر نوارهای مشابهی را ایجاد کردند که احتمالاً بیانگر وجود ژن یا ژنهای مشابهی است. Ramezani و همکاران (2009) در مطالعه تنوع ژنتیکی 22 ژنوتیپ گلرنگ با نشانگرISJ گزارش کردند که تطابق خوبی بین تنوع ژنتیکی و تنوع جغرافیایی وجود ندارد. در مطالعهای دیگر، برای تعیین تنوع ژنتیکی 20 رقم گندم بومی سیستان از نشانگرهای ISJ و PCR-RAPD استفاده شد. نتایج حاصل از آن روابط خویشاوندی ارقام گندم با دو منشأ بومی سیستان و غیربومی را به خوبی آشکار کرد (Bandani et al., 2005). از آنجا که اجرای هر برنامه اصلاحی وابسته به وجود تنوع ژنتیکی بوده است بنابراین، انتخاب والدین مناسب در برنامههای تلاقی برای تولید هیبریدهایی با حداکثر هتروزیگوسیتی امری ضروری است. وقتی والدین از نظر ژنتیکی فاصله بیشتری از هم داشته باشند، به تعداد کمتری تلاقی برای دستیابی به بهترین جمعیت نیاز است و هتروزیس قویتری در نتاج ظاهر میشود. بنابراین، با اجرای تلاقی برای تولید ارقام مناسب با داشتن خصوصیات مورد نظر، از ارقامی که دارای بیشترین فاصله ژنتیکی و صفات مورد نظر باشند میتوان استفاده نمود. نتایج به دست آمده از این مطالعه نشان داد که میتوان از آغازگرهای اینترون-اگزون ISJ برای بررسی روابط خویشاوندی و انتخاب والدین مناسب در برنامههای تلاقی به منظور تولید هتروزیس استفاده نمود. هر چند به علت نیمهتصادفی بودن آغازگرهای ISJ نمیتوان به طور دقیق از روی دندروگرام و فواصل حاصل از ماتریس تشابه در مورد والدین پیشنهادی برای تلاقی تودههای آویشن نظر داد اما با توجه به تنوع ژنتیکی موجود و بیشترین فاصله ژنتیکی میتوان با در نظر گرفتن صفات مطلوب به تلاقی دو توده (شمارههای 4 و 7) که هر دو از زیرگونه T. daenensis subs lancifoliusاشاره کرد. نتایج پژوهش حاضر نشان داد که نشانگرهای اینترونی-اگزون ISJ روشی ارزشمند در ارزیابی تنوع ژنتیکی آویشن دنایی است به گونهای که آغازگرهای به کار رفته قادر به تفکیک دو زیرگونه آویشن دنایی از یکدیگر بوده است. بنابراین، از اطلاعات تنوع ژنتیکی حاصل از این نوع نشانگر میتوان برای انجام تحقیقات کاربردی به منظور اصلاح گیاه آویشن دنایی استفاده نمود. این مطالعه، شناختی کلی از تنوع ژنتیکی دو زیرگونه آویشن دنایی بود که تحقیقات وسیعتر ژنتیکی با به کارگیری سایر نشانگرهای مولکولی نظیر: AFLP (Amplified fragment length polymorphism)، SSR (simple sequence repeat)، SRAP (Sequence-related amplified polymorphism). و نشانگرهای آیزوزایمی میتواند بسیار سودمند باشد. همچنین، بررسی تنوع ژنتیکی آنها با مطالعات ریختشناسی در کنار نشانگرهای مولکولی میتواند اطلاعات جامعتری در این زمینه در اختیار پژوهشگران قرار دهد. از آنجا که دادههای تولید شده در این بررسی بیشترین اهمیت را در نشان دادن میزان چندشکلی خود نشانگر دارد میتوان از این نوع نشانگر در مطالعاتی که با حجم نمونه بیشتری سر و کار دارند استفاده کرد.
سپاسگزاری از مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور به خاطر در اختیار گذاشتن نمونههای آویشن سپاسگزاری میشود. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| مراجع | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Alvandi, M. R. (1996) Investigated morphological and phytochemical plant Thymus daenensis Celak. M.Phil. thesis, Isfahan University of Medical Sciences, Isfahan, Iran (in persian). Anderson, J. A., Church, J. E., Autrique, S. D., Thanksley, S. and Sorrells, M. E. (1993) Optimizing parental selection for genetic linkage map. Genome 36(1): 181-188. Bandani, A. R. Mohhamadi, A. Imamjomeh, A. A. Khalafbaghi, M. R. Ravan, S. and Akbari Moghadam, H. (2005) Estimation of genetic diversity in genotypes of wheat using RAPD-PCR (random primers) and ISJ (Semi-Random Primers) markers. 4th National Biotechnology Congress of Iran, Kerman, Iran (in persian). Chawla, H. S. (2003) Principles of plant biotechnology. (trans. Farsi, M. and Zolali, M.) Ferdowsi University of Mashhad Press, Mashhad (in persian). Dababneh, B. F. (2007) Antimicrobial activity and genetic diversity of Thymus species on pathogenic microorganisms. Journal of food, Agriculture and Environment 5 (3,4): 158-162. Farshadfar, A. A. (1997) Principles and methods of multivariate statistics. vol. 2., Razi University Press, Kermanshah (in persian). Frahani, E. and Arzani, A. (2004) The use of semi-random marker for evaluation of genetic diversity among cultivars and F1 hybrids of durum wheat. In: Proceedings of the 4th International Iran and Russia Conference, Isfahan University of Technology, Isfahan, Iran. Gawel, M., Wisniewska, I. and Rafalski, A. (2002) Semi-specific PCR for the evaluation of diversity among cultivare of wheat and triticale. Cellular and Molecular Biology Letters 7: 577-582. Hashemi-Petroudi, S. H., Mirmohammadi Maibody, S. A. M., Nematzadeh, Gh. A. and Arzani, A. (2010) Semi-random PCR markers for DNA fingerprinting of rice hybrids and their corresponding parents. African Journal of Biotechnology 9(7): 979-985. Khanuja, S. P. S., Shasany, A. K., Darokar, M. P. and Kumar, S. (1999) Rapid isolation of DNA dry and fresh samples of plants producing large amounts of secondary metabolites and essential oils. Plant Molecular Biology Reporter 17: 1-7. Kumar, L. S. (1999) DNA marker in plant improvement. Biotechology Advances 17: 143-182. Mahdavi, S. and Karimzadeh, G. (2010) Karyological and nuclear DNA content variation in some Iranian endemic Thymus species (Lamiaceae). Journal of Agricultural Science and Technology 12: 447-458. Melchinger, A. E. (1993) Use of RFLP markers for analyses of genetic relationships among breeding materials and prediction of hybrid performance. In: Procceding of the 1st International Crop Science Congress, Ames, CSSA, Madison, Wisconsin, USA. Mojiri, F., Zabeti, S. M., Ismaili, A., Nazarian-Firouzabadi, F., Madah-Arefi, H. and Ahmadi, H. (2010) Optimization of genomic DNA extraction method in leaf of Thymus spp medicinal plant. 4th Regional Congress on Advances in Agricultural Research (west of Iran), University of Kordestan, Sanandaj, Iran (in persian). Nowosielski, J., Podyma, W. and Nowosielska, D. (2002) Molecular research on the genetic diversity of polish varieties and landraces of Phaseolus coccineus L. and Phaseolus vulgaris L. using the RAPD and AFLP methods. Cellular and Molecular Biology Letters 7: 753-762. Powell, W., Morgante, M., Ander, C., Hanafey, M., Vogel, J., Tingy, S. and Rafalaski, v. (1996) The comparison of RFLP, RAPD, AFLP and SSR (microsatellite) marker for germplasm analysis. Molecular Breeding 2: 225-238. Przetakiewicz, J., Nadolska-Orczyk, A. and Orczyk, W. (2002) The use of RAPD and semi-random markers to verify somatic hybrids between diploid lines of Solanum tuberosum L. Cellular and Molecular Biology Letters 7: 671-676. Pullman, G. M. and Sliper, D. A. (2001) Crop breeding (trans. Arzani, A.) Isfahan University of Technology, Isfahan (in persian). Rafalski, A., Gidzinska, M. and Wisniewska, I. (1997) PCR-based systems for evaluation of relationships among maize inbreds, genetics and biotechnology of maize and sorghum. Royal Society Chemistry Cambridge, Cambridge. Rafalski, A., Madej, L. Wisniewska, I. and Gawel, M. (2002) The genetic diversity of components of rye hybrids. Cellular and Molecular Biology Letters 7: 471-475. Rahimmalek, M., Bahreininejad, B., Khorrami, M. and Sayed tabatabaei, B. E. (2009) Genetic variability and geographic differentiation in Thymus daenensis subsp. daenensis, an endangered medicinal plant, as revealed by Inter Simple Sequence Repeat (ISSR) markers. Biochemical Genetics 47: 842-831. Ramezani, M., Ismaili, A., Nazarian-Firouzabadi, F. and Bakhshkhaniki, Gh. (2009) Study of genetic diversity among safflower genotypes (Carthamus tinctorius L.) using ISJ molecular markers. MSc thesis, Payame Noor University, Tehran, Iran (in persian). Rustaii, A., Fakhre Tabatabaii, S. M., Omidbigi, R., Sefidkon, F. and Hassani, M. A. (2009) valuation of morphological diversity of Danei thyme (Thymus daenensis Celak) populations from Iran. 6th Congress of Iranian Horticultural Sciences, Guilan University, Rasht, Iran (in persian). Sajjadi, S. E. and Khatamsaz, M. (2003) Composition of the essential oil of Thymus daenensis Celak. Subsp. lancifolius (Cleak.) Jalas. Journal of Essential Oil Research 15: 34-35. Samiei, K., Arzani, A. and Mirmohammadi Maibodi, S. A. M. (2008) Evaluation of genetic diversity of Iranian indigenous clover populations, using random and semi randoms primers. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources 12(45): 157-164 (in persian). Schaut, J. W., Qi, X. and Stam, P. (1997) Association between relationship measures AFLP markers, pedigree data and morphological traits in barley. Theoretical and Applied Genetic 95: 1161-1168. Sharma, K. K., Crouch, J. H. and Hash, C. T. (2002) Applications of biotechnology for crop improvrment: Prospects and constraints. Plant Science 163: 381-395. Thimmappaiah, W., Santhosh, G., Shobha, D. and Melwyn, G. S. (2008) Assessment of genetic diversity in cashew germplasm using RAPD and ISSR markers. Scientia Horticulturae 118: 1-7. Weining, S. and Henry, v. (1995) Molecular analysis of DNA polymorphism of barley (Hordeum spontaneum L.) germplasm using the polymerase chain reaction. Genetics Research Crop Evolution 42: 273-281. Weining, S. and Langridge, P. (1991) Identification and mapping of polymorphisms in cereals based on the polymerase chain reaction. Theoretical and Applied Genetic 82: 209-216. Yavari, A. R., Nazeri, V., Sefidkon, F., Zamani, Z. and Hassani, M. H. (2012) Evaluation of genetic diversity among and within some endemic populations of Thymus migricus Klokov & Desj.-Shost, using RAPD molecular markers. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants 28(1): 35-47 (in persian). Zargari, A. (1990) Medicinal plants. vol. 4. Tehran University Press, Tehran, Iran (in persian). Ziaei Nasab, M., Hesamzadeh Hejazi, S. M., Bihamta, M. R., Mirza, M. and Naderi-Shahb, M. A. (2012) Assessment of karyotypical variation among 16 populations of Thymus daenensis Celak and Thymus kotschyanus Boiss. species in Iran. African Journal of Biotechnology 11(5): 1028-1036. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,323 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 668 |
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||